기관회원 [로그인]
소속기관에서 받은 아이디, 비밀번호를 입력해 주세요.
개인회원 [로그인]

비회원 구매시 입력하신 핸드폰번호를 입력해 주세요.
본인 인증 후 구매내역을 확인하실 수 있습니다.

회원가입
서지반출
항 NCA-95 단일클론항체의 $^{99m}Tc$표지 키트 제조 및 특성 연구
[STEP1]서지반출 형식 선택
파일형식
@
서지도구
SNS
기타
[STEP2]서지반출 정보 선택
  • 제목
  • URL
돌아가기
확인
취소
  • 항 NCA-95 단일클론항체의 $^{99m}Tc$표지 키트 제조 및 특성 연구
  • $^{99m}Tc$ Labeling Kit Preparation and Characteristics of Anti-NCA-95 Monoclonal Antibody
저자명
홍미경,정재민,정준기,최석례,김채균,이용진,이동수,이명철,고창순,Hong. Mee-Kyoung,Jeong. Jae-Min,Chung. June-Key,Choi. Seok-Rye,Kim. Chae-Kyun,Lee. Yong-Jin,
간행물명
大韓核醫學會誌
권/호정보
1996년|30권 4호|pp.541-547 (7 pages)
발행정보
대한핵의학회
파일정보
정기간행물|
PDF텍스트
주제분야
기타
이 논문은 한국과학기술정보연구원과 논문 연계를 통해 무료로 제공되는 원문입니다.
서지반출

기타언어초록

우리는 국내에서 개발한 항 NCA-95 단일클론항체의 면역학적 특성을 규명하고 $^{99m}Tc$ 표지법을 연구하여 골수면역 신티그라피법을 개발한 바 있다. 그러나 $^{99m}Tc$ 단일클론항체의 표지효율이 낮고, 과정이 복잡하여 시간이 오래 걸리는 단점이 있어 임상적용에 어려움이 있었다. 본 연구에서는 $^{99m}Tc$ 표지 단일클론항체의 표지과정을 개선하여 시간을 단축하고 표지효율을 높이는 연구를 실시하였다. 티올기와 아민 및 하이드록시 그룹을 가진 착화제(chelator)와 $^{99m}Tc$은 안정한 복합체를 형성하므로, 이러한 화학적 성질을 이용하여 항체를 환원시켜 티올기를 생성하고 여기에 약한 착화제와 결합한 $^{99m}Tc$을 가하는 transchelation법을 연구하였다. 본 연구에서는 방법 1. ${eta}$-mercaptoethanol로 항체를 환원하고 환원제의 존재하에 $^{99m}Tc$-gluconate 를 이용한 표지법, 방법 2. 항체의 환원후 ${eta}$-mercaptoethanol을 제거하고 $^{99m}Tc$-gluconate를 사용한 표지법, 방법 3. 환원제를 제거한 항체에 MDP를 먼저 가하고 여기에 $^{99m}Tc$을 가하는 표지법을 시도하여 보았다. 고정상으로는 ITLC-SG를, 이동상으로는 생리식염수와 아세톤을 사용하여 표지효율을 구하였다. 방법 1은 표지효율이 40-70%이나 좋은 골수영상을 얻었고, 방법 2의 경우 표지효율은 70-80%로 개선되었으나 혈액풀의 방사능이 높았다. MDP를 착화제로 이용한 방법 3은 표지효율이 $92.4{pm}5.9%$(n=15) 이고 면역반응성은 약 60%였으며 골수면역 신티그라피에서도 좋은 영상을 얻을 수 있었다. 때로는 $^{99m}Tc$- MDP 방사능이 높아 뼈에 흡수되는 방사능이 증가하는 단점이 있지만 PD-10 컬럼을 이용하여 분리가 가능하였다. 환원된 항체를 냉동보관하여 사용하였을 경우에도 안정하여 냉동보관 47일 까지 90%이상의 표지효율을 보였다. 본 연구 결과 $^{99m}Tc$ 표지 항 NCA-95 단일클론항체의 표지법의 개선으로 더 쉽게 임상에 이용할 수 있게 될 것으로 생각된다.

기타언어초록

The previous monoclonal antibody labeling method for bone marrow immunoscintigrapy was complicated and laborious for clinical application. Also it showed a relatively low labeling efficiency. To improve this procedure, we compared several direct labeling methods of $^{99m}Tc$. 1) The labeling efficiency in the method using gluconate as a transchelator was low (40-70%), but immunoscintigraphy using this radiotracer produced a clear image. 2) To improve labeling efficiency, ${eta}$-mercaptoethanol was removed after reduction. The labeling efficiency was improved up to 70-80%, but the radioactivity of the blood pool was high. 3) The higest labeling efficiency (>90%) and best quality images could be obtained by using MDP as a transchelating agent. It did not require additional procedures for separation of labeled antibodies. The immunoreactivity of this antibody was 60%. Residual MDP which can be taken up by the bone could be removed by PD-10 column. The reduced antibodies were stable with a high labeling efficiency (>90%) for up to 47 days by deep freezing. We concluded that the improved procedure for $^{99m}Tc$ labeling of anti-NCA-95 monoclonal antibody using MDP as a transchelating agent will be a simple and useful method for clinical application.