화학물질에 의한 간암 유발과정에서 transferrin receptor (TfR)의 변동을 밝히기 위해 간을 부분절제한 정상백서의 재생간과 발암물질로 3-Me-DAB를 8주간 투여한 백서 또는 약물 투여 후 부분 간절제 수술을 행하여 세포분열을 유도시킨 백서 간조직으로부터 parenchymal cell (PC)과 nonparenchymal cell (NPC)를 분리하고 각각의 세포막을 제조하여 125I-transferrin 결합실험을 실시한 바 다음과 같은 성적을 얻었다. 1. 3-Me-DAB 투여에 의하여 간조직에서 oval cell의 증식, 재생성 변화, 결절형성, 담관의 증식 및 담관세포암 등의 현저한 조직학적 변화가 동반되었다. 그러나 간세포증식을 더욱 촉진시키기 위하여 부분간절제 수술을 하였을 때 수술 후 경과에 따른 형태학적 변동은 큰 차이가 없었다. 2. 정상 재생간의 PC 및 NPC homogenate에서 transferrin 결합량은 부분간 절제 수술 후 1일 및 3일에 증가되었으며 수술 후 7일에 정상으로 회복되었다. 3-Me-DAB 투여에 의해 두세포군에서 모두 정상세포보다 높게 나타났으며 재생기간에 따라 계속 증가되었다. 3. 정상간의 NPC 세포막에서 transferrin 최대 결합량 (Bmax)은 PC 세포막에서 보다 많이 분포되어 있었으며, Kd는 양세포막에서 5.05 또는 6.3nM로 비슷하였다. 4. 재생간의 NPC 및 PC 세포막에서 transferrin 결합량은 부분 간절제 수술 후 1일 및 3일에 40 ~ 50% 증가되었고 수술 후 7일에 정상치로 회복되었다. 5. 3-Me-DAB 처치에 의하여 NPC 및 PC 세포막의 transferrin 결합량은 정상 간세포막에서 보다 약 3배 증가되었고, 3-Me-DAB 투여후 재생간의 NPC 세포막에서는 부분 간절제 수술 후 3일까지 증가된 후 감소되는 양상인데 반해 PC 세포막에서는 수술 후 7일까지 계속 증가되었다. 6. 3-Me-DAB 투여 후 NPC 및 PC 세포막 transferrin binding site에서 Kd치가 3.1 ~ 4.1 nM과 25.4 ~ 54.1 nM인 두 종류가 존재하는 것으로 나타났다. 이상의 실험성적으로 TfR는 1) 간조직의 PC 및 NPC 세포에 모두 분포되어 있으며, 2) 정상 재생간 및 3-Me-DAB의 처리 후 간세포에서의 세포막 TfR의 증가는 세포내 합성량의 증가에 의하여 일어나며, 3) 정상 재생간의 세포막 TfR는 한 종류의 high affinity site (Kd, <3.1 ~ 7.5 nM)에 의하여 증가되나, 3-Me-DAB 처리 후 간세포막에서는 정상에서와 같은 high affinity형 이외에 affinty가 낮은 다른 형태의 TfR (Kd, 25.4 ~ 54.1 nM)가 세포막으로 출현됨으로써 크게 증가되는 것으로 사료된다.
To investigate the alteration of transferrin receptor (TfR) in the proliferating or transformed liver cells, 125I-transferrin binding experiment was carried out in the isolated parenchymal cells (PC) or nonparenchymal cells (NPC) from normal regenerated rat liver after partial hepatectomy and from the liver of 3-methyl-4-dimethyl-aminoazobenzene (3-Me-DAB) treated rat. With the administration of 3-Me-DAB for 8 weeks, the liver tissue showed marked morphologic changes of oval cell proliferation, regenerations of hepatocytes, and atypical proliferations of bile ducts, but these changes were little affected by partial hepatectomy. Transferrin binding values in PC or NPC homogenate from the regenerated liver of normal rat, were increased by 3rd day and diminished to control level at 7th day after partial hepatectomy. With the treatement of 3-Me-DAB for 8 weeks, transferrin binding sites in homogenates were higher than those of normal rat liver and increased by 7th day after partial hepatectomy. Transferrin binding sites (Bmax) in the cell membrane of NPC were higher than those of PC of normal rat liver, but there was no significant difference in Kd values between both groups (5.05, 6.3 nM). In the normal resenerated rat liver, transferrin binding sites in the PC or NPC plasma membrane, were increased by 3rd day and diminished to control level at 7th day after partial hepatectomy. With 3-Me-DAB tratment, transferrin binding sites in both liver NPC and PC plasma membrane were increased about 3 folds, compared to those in each plasma membrane of normal rat liver. And after partial hepatectomy of 3-Me-DAB trated rat, transferrin binding sites were increased by the 3rd day in the NPC plasma membrane but increased by the 7th day in the PC plasma membrane. In the transferrin binding sites of the PC or NPC plasma membrane of 3-Me-DAB treated liver, two kinds of Kd values (3.1 ~ 4.7 nM, 25.4 ~ 54.1 nM) were detected. The present results suggest that 1) TfRs are distributed in the liver PC as well as NPC; 2) Increased TfRs in PC or NPC plasma membrane of normal regenerated liver after partial hepatectomy and 3-Me-DAB treated rat liver, may be due to increased intracellular synthesis; 3) Increased TfRs in normal regenerated liver after partial hepatectomy might be related to the expression of a single type of high affinity site (Kd, 3.1 ~ 7.5 nM), but in 3-Me-DAB treated rat liver might be related to the expression of high and low affinity types of receptors (Kd, 25.4 ~ 54.1 nm).
